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Institute細胞的使用方法介紹

發(fā)布日期:2020-08-19      點擊:2224
  Institute細胞要要想在培養(yǎng)基中生長,便要創(chuàng)造細胞能夠生長的緩沖系統(tǒng)。細胞較脆弱一旦暴露在不適宜的環(huán)境中便會立馬死亡。
      在對培養(yǎng)基的環(huán)境進行調(diào)試的時候,要做成一套緩沖系統(tǒng),能夠在方方面面照顧到細胞的成長,在細胞培養(yǎng)基中接入碳酸氫鈉讓其與空氣中的二氧化碳平衡,設(shè)置一定量的培養(yǎng)液,讓細胞正常的成長。并且在培養(yǎng)的過程中,不要把細胞培養(yǎng)基的蓋得太緊,以免造成氧氣的缺失,影響細胞的活性。
  使用方法
  Institute細胞是一種高度分化細胞,屬于不增殖細胞群,不能增殖和傳代,只能進行原代培養(yǎng)且存活時間較短。取出細胞培養(yǎng)瓶,用75%酒精消毒瓶身,拆下封口膜,放入37℃、5%CO2、飽和濕度的細胞培養(yǎng)箱中靜置3-4h,以穩(wěn)定細胞狀態(tài)。
  吸出細胞培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)基,添加0.25%胰蛋白酶消化液1mL至培養(yǎng)瓶中,輕微轉(zhuǎn)動培養(yǎng)瓶至消化液覆蓋整個培養(yǎng)瓶底后,吸出多余胰蛋白酶消化液,37℃溫浴1-3min;倒置顯微鏡下觀察,待細胞回縮變圓后,再加入5ml*培養(yǎng)基終止消化。
  用吸管輕輕吹打混勻、分散細胞,置于37℃、5%CO2、飽和濕度的細胞培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng);待細胞*貼壁后,培養(yǎng)觀察;之后每隔2-3天更換新鮮的*培養(yǎng)基。

滬公網(wǎng)安備 31011502010451號

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